Морфологическое сравнение биоптатов раневой поверхности кожи у кроликов: «ПлазмолифтингТМ» и стандартные схемы лечения

Материал из wiki
Перейти к: навигация, поиск

ГУСЕВА В.А. аспирант ФГБОУ ВПО СПБГАВМ, КОРОТКОВА О.И. дерматокосметолог ООО «ПлазмолифтингТМ»

Тромбоцитарная аутологичная плазма успешно применяется во многих областях гуманной медицины: травматологии, стоматологии, гинекологии, косметологии с целью ускорения регенерации тканей [2,3]. Об эффективности применения тромбоцитарной аутологичной плазмы в лечении людей с различными патологиями травматического характера свидетельствуют многочисленные научные публикации разработчика технологии «ПлазмолифтингТМ», д. м. н. Р.Р.Ахмерова.[1]

Цель исследования: оценить влияние тромбоцитарной аутологичной плазмы на морфологические характеристики раневой поверхности кожи кроликов.

Задачи: сравнить способы лечения ран у кроликов с применением тромбоцитарной аутологичной плазмы и с применением обычного метода. Оценить результаты лечения с использованием гистоморфологии.

Материалы и методы. Для опыта использовали кроликов мясной породы, возраст 1 год, самцы. Кроликов кормили кормом «Вака» и сеном, содержали в отдельных клетках. Всего 2 группы кроликов: подопытная и контрольная. В каждой группе по 3 кролика.

Обезболивание осуществляли 2% раствором лидокаина подкожно в объёме 1,5 мл.

Раны наносили на дорсолатеральной стороне туловища, с двух сторон от позвоночника, с целью возможности визуальной оценки и взятия гистологического материала. Удаляли кожу и подкожную клетчатку. Диаметр ран 2,9 -3 см.

Перед нанесением ран осуществляли взятие крови у кроликов в объёме 8 мл из ушной вены и вены сафена в специальные пробирки «ПлазмолифтингТМ» (Россия) с разделительным гелем. Центрифугирование осуществляли на центрифуге СМ-6 со скоростью 2500 об/мин. Тромбоцитарную аутологичную плазму получали в объёме 3 мл и сразу вводили в место ранения.

Результаты исследования. Подопытным кроликам тромбоцитарную аутологичную плазму инъецировали внутрикожно по 1,5 мл на рану. На одну инъекцию приходилось 0,3 мл, всего 5 инъекций на рану, 4 инъекции вводили по периферии раны и 1 в центр раны, на глубину 1-2 мм. 1 раз в 5 дней, всего 4 цикла инъекций. Ежедневно раны орошали 0, 05 % раствором хлоргексидина, в объёме 2 мл. Указанные процедуры повторяли через 5 суток, всего было выполнено 4 процедуры.

Раны контрольной группы кроликов орошали 0, 05 % раствором хлоргексидина в объёме 2 мл и наносили мазь «Левомеколь» ежедневно. Дополнительно осуществляли инъекции препарата «Травматин» по 0,5 мл подкожно в холку, первые 10 дней ежедневно, затем через 1 день. Всего 20 дней. Взятие гистологического материала производили на 7-е сутки (после 2-ой процедуры) и 17-е сутки (после 4-ой процедуры). Диаметр ран на 7-е сутки у подопытных кроликов составил 1,63 ± 0,05 см. Было отмечено небольшое вздутие и сморщивание струпа, и уменьшение ран в диаметре. Дефект характеризуется наличием разрушенного эпидермиса и глубоких слоёв дермы. Дно дефекта состоит из незрелой соединительной ткани, среди которой образуются многочисленные тонкостенные кровеносные сосуды небольшого диаметра. В соединительной ткани имеется незначительная инфильтрация сегментоядерными клетками. Сегментоядерные клетки представлены нейтрофильными лейкоцитами и «псевдоэозинофилами». В клеточных инфильтратах имеются немногочисленные лимфоциты и плазматические клетки. Со стороны эпидермиса по краям дефекта имеются слабовыраженные признаки эпидермизации (образование эпидермального валика).

У животных контрольной группы диаметр ран 2,8 ± 0,158 см. Рана характеризуется глубоким дефектом кожи с разрушением эпидермиса и глубоких слоёв дермы. Дно дефекта представляет собой массивный разрост незрелой соединительной ткани, в которой формируются тонкостенные кровеносные сосуды, и имеется выраженная диффузная инфильтрация сегментоядерными лейкоцитами. По краям дефекта имеются слабо выраженные признаки эпидермизации – нарастание валика эпидермизации над язвенной поверхностью и под струпом. Поверхность язвы гиперемирована, имеются кровоизлияния.

Через сутки после четвёртой инъекции тромбоцитарной аутологичной плазмы (17-е сутки лечения) диаметр ран у подопытной группы составил 0,5 ± 0,007 см, стадия эпителизации отмечается практически по всей поверхности ран. Гистологическая картина характеризуется целостным эпидермисом и умеренно выраженными признаками хронического гнойного воспаления в поверхностных и глубоких слоях дермы.

У контрольной группы стадия эпителизации отмечается по краям ран, в центре находится повреждённая поверхность. Диаметр ран 1,3 ± 0,007 см. Гистологическая картина характеризуется наличием глубокого дефекта кожи с разрушением эпидермиса, поверхностных и глубоких слоёв дермы. Дно дефекта состоит из незрелой соединительной ткани, среди которой образуются многочисленные тонкостенные кровеносные сосуды небольшого диаметра. В соединительной ткани имеется умеренно выраженная инфильтрация сегментоядерными клетками – диффузная с очаговами скоплениями вокруг кровеносных сосудов. Сегментоядерные лейкоциты представлены нейтрофильными лейкоцитами и «псевдоэозинофилами». В клеточных инфильтратах имеются немногочисленные лимфоциты и плазматические клетки. Со стороны эпидермиса по краям дефекта имеются слабо выраженные признаки эпидермизации (образование эпидермального валика).

Выводы. Применение тромбоцитарной аутопламы в лечении ран у кроликов способствует ускорению заживления: у подопытных кроликов стадии заполнения ран грануляционной тканью и эпителизация наступили раньше по сравнению с контрольной группой. Диаметр ран у подопытных кроликов был достоверно меньше (р≤0,05) на 67 % по сравнению с контрольной группой на момент взятия последних гистологических проб.

Summary

Application of autological platelets plasma is improve rabbits wound healing. We was oversee better healing in experiment rabbits than control rabbits. This is a new perspective direction in veterinary medicine, which requires new investigation.

Список литературы

1. Ахмеров Р.Р. Тромбоцитарная аутологичная плазма. Вариант аутогемотерапии. http://doctor-akhmerov.ru/articles/trombocitarnaya-plasma-variant-autohemoterapii/ - Москва 23.12.2012.

2. Джуффре Дж., Капуто Дж., Миссо С., Пелузо Ф. Лечение богатой тромбоцитами плазмой и гемостаз у пациентов с риском возникновения кровотечений - Журнал «Минерва в стоматологии» (Minerva Stomatologica). Ноябрь-декабрь 2006 г.; 55(11-12):599-609.

3. Шейда Елена Владимировна. Антимикробные свойства тромбоцитарного катионного белка сельскохозяйственных животных – автореферат, Уфа, 2010