БоТП стимулирует пролиферацию клеток микрососудистого эндотелия кожи и стволовых клеток жировой ткани после внешнего облучения

Материал из wiki
Перейти к: навигация, поиск

Хаубнер Ф. (Haubner F), Муштер Д. (Muschter D), Шустер Н. (Schuster N), Поль Ф. (Pohl F), Аренс Н. (Ahrens N), Прантль Л. (Prantl L), Гасснер Х.Г. (Gassner HG).

Автореферат

ИСХОДНАЯ ИНФОРМАЦИЯ:

В настоящее время, для лечения хронических ран рекомендуется применять препараты богатой тромбоцитами плазмы (PRP), что обусловлено наличием у нее потенциальных проангиогенных свойств. Микроваскулярные нарушения являются одним из основных факторов, лежащих в основе осложнений, которые возникают при заживлении ран, вызванных облучением. Механизмы воздействия PRP на облученные клетки в процессе заживления ран кожных покровов остаются малоизученными.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ:

Клетки микрососудистого эндотелия человека (HDMEC) и стволовые клетки жировой ткани человека (hASC) культивировали и облучили дозами от 2 до 12 Гр. PRP активировали, подвергли анализу и в различных концентрациях добавили к инкубационным средам, подвергавшимся внешнему облучению. Количество клеток определяли через 48 часов после облучения при помощи полуавтоматической системы подсчета клеток. Уровни интерлейкина-6 (IL-6), основного фактора роста фибробластов (bFGF) и растворимого фактора межклеточной адгезии-1 (sICAM-1) в супернатантах совместных культур HDMEC и hASC определяли посредством фермент-связанного иммуносорбентного исследования/ИФА (ELISA). В качестве контроля использовались не подвергавшиеся облучению hASC и HDMEC.

РЕЗУЛЬТАТЫ:

Использованные в исследовании препараты PRP подверглись анализу и, согласно полученным результатам, содержали фактор роста тромбоцитов (PDGF-AB), фактор роста эндотелия сосудов (VEGF), bFGF и sICAM-1 в высокой концентрации. Посредством добавления PRP к облученным культурам HDMEC и hASC удалось предотвратить значительное снижение числа клеток, обусловленное облучением. Применение 10% PRP обеспечило восстановление количества клеток до уровней, наблюдающихся в не подвергавшихся воздействию радиации культурах. В монокультурах hASC, после добавления 10% PRP, значительное снижение экспрессии основного фактора роста фибробластов (FGF) наблюдалось и без воздействия внешнего облучения, и после облучения дозами от 6 до 12  Гр. Такое же подавляющее действие PRP наблюдалось и при добавлении ее к HDMEC. Однако при добавлении 5 или 10% PRP в совместно культивируемые HDMEC-ASC наблюдалось дозозависимое увеличение экспрессии bFGF. В культурах, стимулированных добавлением 5% PRP, дозы 6-12 Гр способствовали увеличению экспрессии IL-6.

ВЫВОДЫ:

Применение PRP в совместно культивируемых клетках hASC и HDMEC обеспечивает восстановление процессов пролиферации, нарушенных воздействием внешнего радиоактивного излучения. Предположительно, восстановление происходит посредством стимуляции экспрессии bFGF. В облученных тканях PRP может индуцировать провоспалительные стимулы, что оказывает благоприятное терапевтическое воздействие в случае возникновения нарушений в процессе заживления хронических ран. Сочетание hASC и препаратов PRP может успешно применяться для лечения ран, возникших в результате облучения.